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      RIPA 裂解液(中)說明書
      點擊次數:3520 更新時間:2020-08-17

      RIPA 裂解液(中)

       

      多種成分均可以從細胞中提取總蛋白,如 Triton、SDS、NP-40 等。RIPA 裂解液(中)

      (RIPA Lysis Buffer)是采用一種經典的細胞組織快速裂解并獲得總蛋白的裂解液,其裂解強度大于 NP-40 裂解液、RIPA 裂解液(弱)。所獲得的蛋白質可用于 Western,免疫沉淀(Immunol Precipitation,IP)等。

      Medium RIPA Lysis Buffer 主要由 Tris 、NP-40、sodium deoxycholate 等組成, 含有多種蛋白酶抑制劑成分,可以有效抑制蛋白的降解,并維持原有的蛋白間相互作用。

       

      產品組成:

       

       

       

      Medium RIPA Lysis Buffer

      PMSF(100mM)

      100ml

      1.5ml

      -20℃

      -20℃

       

       

       

      操作步驟(僅供參考)

      (一)貼壁培養細胞

      1、取 Medium RIPA Lysis Buffer 置室溫溶解混勻,加入 PMSF,使 PMSF 終濃度為 1mM。

      2、去除貼壁細胞的培養液,用 PBS、NS 或無血清培養液清洗 1 次,低速離心,棄上清, 留取沉淀。

      3、按照 6 孔板每孔加入 150~250μl 含有 PMSF 的裂解液的比例,加入 Medium RIPA Lysis Buffer 。移液器輕輕吹打,使裂解液和細胞充分接觸。置于冰上或 4℃裂解 15~ 30min,通常裂解液作用于細胞 1~3 秒內,細胞就會被裂解。通常 6 孔板每孔細胞加100μl 解液已經足夠,如果細胞密度很高可以適當加大裂解液的用量到 200~250μl。

      4、10000~12000g,4℃離心 5~10min(如無低溫離心機,室溫下離心亦可),取上清。

      5、進行后續的 SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

      (二)懸浮培養細胞

      1、取 Medium RIPA Lysis Buffer 置室溫溶解混勻,加入 PMSF,使 PMSF 終濃度為 1mM。

      2、低速離心懸浮細胞,棄上清,收集沉淀。

      3、用手指輕彈細胞,使其松散。按照 6 孔板每孔細胞加入 150~250μl 含有 PMSF 的裂解液的比例,加入 Medium RIPA Lysis Buffer 。通常 6 孔板每孔細胞加入 150μl 裂解液已經足夠,但如果細胞密度非常高可以適當加大裂解液的用量到 200~250μl。再用手指輕彈以充分裂解細胞,充分裂解后應沒有明顯的細胞沉淀。

      4、10000~12000g,4℃離心 5~10min(如無低溫離心機,室溫下離心亦可),取上清。

      5、進行后續的 SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

      (三)組織樣本

      1、取 Medium RIPA Lysis Buffer 置室溫溶解混勻,加入 PMSF,使 PMSF 終濃度為 1mM。

      2、把組織剪切成細小的碎片,越小越好。

      3、取在液氮或超低溫冰箱中冷凍 30min 以上的組織,迅速用液氮研磨,研磨過程盡量控制在 1~2min 之內,以減少蛋白的降解。

      4、按照每20mg組織加入150~250μl裂解液的比例加入含有PMSF的裂解液。冰上或4℃ 裂解 15~30min。

      5、步驟 3、4 亦可以采用如下過程:按照每 20mg 組織加入 150~250μl 裂解液的比例, 加入含有 PMSF 的 Medium RIPA Lysis Buffer。用玻璃勻漿器或組織研磨器勻漿,直至充分裂解,該過程盡量控制在 1~2min 之內,以減少蛋白的降解。

      6、10000~12000g,4℃離心 5~10min(如無低溫離心機,室溫下離心亦可),取上清。

      7、進行后續的 PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

       

      注意事項:

      1、去除貼壁細胞的培養液后,如果血清中的蛋白沒有干擾,可以不用清洗。

      2、如果裂解不充分可以適當增加裂解液的用量,如果需要高濃度的蛋白樣品,可以適當減少裂解液的用量。

      3、如果細胞量較多,必需分裝成 50~100 萬細胞/離心管,然后再裂解。大團的細胞較難裂解充分,而少量的細胞由于裂解液容易和細胞充分接觸,相對比較容易裂解充分。

      4、如果組織樣品本身非常細小,可以適當剪切后直接加入裂解液裂解,通過強烈 Vortex 使樣品裂解充分。然后同樣離心取上清,用于后續實驗。直接裂解的優點是比較方便, 不必使用勻漿器,缺點是不如使用勻漿器那樣裂解得比較充分。

      5、溶解  RIPA Lysis Buffer 時,應盡量縮短溶解時間,避免有效成分失效。

      6、裂解產物中經常會出現一小團透明膠狀物,屬正常現象。該透明膠狀物為含有基因組DNA 等的復合物。在不檢測和基因組 DNA 結合特別緊密的蛋白的情況下,可以直接離心取上清用于后續實驗;如果需要檢測和基因組結合特別緊密的蛋白,則可以通過超聲處理打碎打散該透明膠狀物,隨后離心取上清用于后續實驗。如果檢測一些常見的轉錄因子,例如 NF-KB、p53 等時,通常不必進行超聲處理,就可以檢測到這些轉錄因子。

      7、細胞裂解的操作步驟,應置于冰上或 4℃進行。

       

      有效期: 12  個月有效。

       

       

      實驗代做服務:

       

      WB代做

      HE染色

      免疫熒光染色

      蛋白相互作用分析

      ELISA免費代檢測

      免疫組化

      熒光定量PCR

      番紅O固綠染色

      流式細胞檢測

      激光共聚焦

      透射電鏡服務

      DNA甲基化實驗

      免疫共沉淀(Co-IP)

      DNA甲基化

      掃描電鏡實驗

      microRNA 測序

      半定量RT-PCR

      分子克隆和質粒載體構建服務

      原位雜交(FIsh)

      石蠟/冰凍切片

      RNA結合蛋白免疫沉淀(RIP

      CCK8檢測

      蛋白雙向(2-D)電泳

      蛋白雙向2D-WB

      ATP/ADP檢測

      Taqman探針

      細胞劃痕

      基因組DNA提取

       

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